Vidéomicroscopes

videomicroscope
  • 1 videomicroscope Axio Observer et 2 vidéomicroscopes Axiovert 200 ZEISS équipés d'un incubateur avec régulation de température et CO2.
  • Sources halogènes en lumière transmise pour les trois systèmes et une source halogène en réfléxion pour un des systèmes
  • Sources lampes HBO en fluorescence pour deux systèmes et système à LED Lumencor pour le troisième sytème
  • Objectifs: 5x Ph, 10x Ph, 20x Ph, 20x, 40x, 60x, 100x
  • Caméras: Coolsnap, Axiocam, et scMOS Hamamatsu
  • Pilotage: Axiovision , Metamorph

Applications:

  • Suivi de cellules vivantes en lumière transmise (jusqu à 4D) ou en fluorescence (jusqu’à 5D) pendant 1 à 72 h

Exemples: - Réparation de lésions
- Suivi de migration cellulaire (modèles 2D et 3D)
- Effet de toxines bactériennes
- Effet d’un médicament

  • Possibilité de suivre en temps réel plusieurs expériences

Exemples: - Effet de médicaments à différentes concentrations
- Effet d’un peptide sur la migration des cellules

  • Suivi de flux ioniques (calcium et chlore…) dans les cellules vivantes

Pas de vidéo

Microscopes confocaux à balayage laser

confocal.jpg

LSM 710 NLO ZEISS

  • microscope confocal LSM 710 NLO ZEISS équipé d'un laser IR pulsé Chameleon de COHERENT et d'un incubateur avec régulation de température et CO2
  • sources lasers visibles: 458 nm, 488 nm, 514 nm, 561 nm, 633nm
  • source laser IR pulsée accordable: 690-1064 nm
  • objectifs: 10x Ph, 20x DIC, 63x DIC
  • 2 PMTs et 1 PMT spectral
  • Pilotage: ZEN 2010
  • Système FLIM BECKER
airy-scan

LSM 880 Airy Scan ZEISS

  • microscope confocal LSM 880 Airy scan ZEISS équipé d'un incubateur avec régulation de température et CO2
  • sources lasers visibles: 458 nm, 488 nm, 514 nm, 561 nm, 633nm
  • objectifs: 10x Ph, 20x DIC, 40x W DIV, 63x O DIC
  • 2 PMTs et 1 barette spectral GaSP
  • Module résolution augmentée AiryScan
  • Pilotage: ZEN

Applications:

  • Suivi de cellules vivantes en lumière transmise (jusqu à 4D) ou en fluorescence (jusqu’à 5D) pendant 1 à 72 h
  • Fonction spectrale
  • Possibilité d’acquisition « multichamps » et « multipositions »
  • Pile d’images en Z pour reconstruction 3D
  • F-techniques: FRAP, FRET, FLIM
  • Generation de Seconde Harmonique (SHG)
coupe peau-120.jpg

MIP d’une coupe de peau (A488, SHG, autofluorescence, DAPI)

a375 beta1integ actin dapi glass z1x63.lsm (RGB)-120.jpg

marquage beta1, integrine et DAPI sur cellule

vegetal.jpg

marquage GFP et autofluorescence sur cellules de tabac

Microscope confocal rapide (spinning disk)

spinningdisk.jpg
  • videomicroscope AxioObserver ZEISS équipé d'une tête Yokogawa (Ropper Scientific) et d'un incubateur avec régulation de température et CO2
  • sources lasers visibles: 405 nm, 491 nm, 561 nm, 633nm
  • source fluorescente: Spectra X Lumencor
  • objectifs: 5x Ph, 10x Ph, 20x DIC, 63x DIC, 100x TIRF
  • caméras HQ2 (Ropper Scientific) et EMCCD Evolve (Ropper Scientific)
  • Pilotage: METAMORPH
  • Système ILAS2 (FRAP3D/TIRF) Ropper Scientific

Applications:

  • Suivi de cellules vivantes en lumière transmise (jusqu à 4D) ou en fluorescence (jusqu’à 5D) pendant 1 à 72 h
  • Imagerie confocale rapide in vivo
  • Possibilité d’acquisition « multichamps » et « multipositions »
  • Pile d’images en Z pour reconstruction 3D
  • F-techniques: FRAP/ FRAP 3D
  • Haute résolution: TIRF

SCANNER DE LAMES

scanner de lames,jpg, 17ko
  • scanner de lames VS 120 OLYMPUS
  • Sources LED en lumière transmise + lumière polarisée
  • Sources Excite en fluorescence: 405nm, 488nm, 514 nm, 633nm
  • Objectifs: 2x , 5x , 10x , 20x, 40x
  • Caméras: Olympus et scMOS Hamamatsu
  • Pilotage: logisciel VS120 + viewer Olyvia
  • Chargement: 100 lames
  • Scan multicouches et Virtual Z (20x et 40x) de lames fixées
  • Autofocus, Extended Focus, lecteur code barre

Application:

  • Acquisition de lames virtuelles en lumière transmise, polarisée et fluorescence
marquege ZO1,jpeg,55ko

marquage ZO-1 sur tissu tumoral

tripple marquage,jpeg, 24ko

triple marquage (noyaux en bleu, ZO-1 en vert et b-tubuline en rouge) en mode EF (40x)

Microscope à fluorescence

axioimageur.jpg
  • Microscope à fluorescence « champ large » automatisé AxioImageur ZEISS
  • Sources halogènes en lumière transmise
  • Sources lampes HBO en fluorescence
  • Objectifs: 5x Ph, 10x Ph, 20x Ph, 40x, 63x, 100x
  • Caméras: Coolsnap
  • Pilotage: Zen (Zstacks, Mosaic)
  • Système « apotome »
cell-fluo2-1-140.jpg

Marquage actine sur cellule

cell-fluo-1-140.jpg

Tripple marquage sur cellule

zo1.jpg-1-140.jpg

Marquage ZO1

Microdissecteur laser

microdissecteur.jpg
  • Microdissecteur PALM Microbeam ZEISS
  • Source laser UV pulsé
  • Source lumineuse LED pour champ clair et HXP pour Fluorescence
  • Objectifs: 2,5x, 5x, 10x, 20x, 40x
  • Caméra : Zeiss Axiocam MRc
  • Système de répartition automatique des échantillons microdisséqués Robomover (jusqu’à 8 types d’échantillons dans le même temps).
  • Collecteur de cellules vivantes en conditions stériles.
  • Pilotage: Robosoftware et LCM/Axiovision version 4.8
  • Ecran tactile

Applications:

-Microdissection laser de population cellulaire avant extraction de l’ADN, l’ARN et isolation des protéines.
-Microdissection sur coupes histologiques colorées ou immunomarquées, en champ clair et fluorescence, tissus humains, animaux ou végétaux.
-Applicable aux cryosections ou tissu FFIP (fixés en formol et inclus en paraffine).
-Applicable aux lames de verre standard.
-Manipulation de cellules vivantes (Sélection positive ou négative).
-Lésions sur tissus ou culture cellulaire.

microdissection principe
microdissection coupe colorée
microdissection fluorescence

Tomographe par coherence optique (OCT)

oct
  • Tomographe par cohérence optique (OCT) LLtech
  • Source:
  • Objectif: 10x
  • Caméra:
  • Pilotage:

Applications

  • Imagerie non invasive et non destructive
  • Biopsies optiques en profondeur du tissu en quelques minutes sans coloration ni marqueur exogène
  • Imagerie 3D avec des résolutions transverse et axiale de l’ordre du micromètre
  • Pénétration de 200 µm à 1mm dans l’échantillon selon la diffusion de la matière
exemple oct

Images OCT d’un échantillon de peau (A), de microparticule préparée à partir de sérum albumine réticulée (B) et de fibres de chanvre (C)